Criopreservação seminal de Colossoma macropomum como estratégia de produção e conservação na Orinoquia Colombiana

Autores

DOI:

https://doi.org/10.22579/20112629.537

Palavras-chave:

criopreservação, peixe nativo, sêmen, tambaqui

Resumo

O tambaqui (Colossoma macropomum) é um peixe nativo da América do Sul. Na Colômbia, não há trabalhos publicados sobre protocolos padronizados para sua criopreservação seminal. A implementação dessa biotecnologia permitiria sua produção comercial contínua e sua introdução nos bancos de genes. O objetivo deste estudo foi avaliar os efeitos da criopreservação no sêmen de C. macropomum submetido a diferentes crioprotectores e envases, e poder consolidar um protocolo eficiente para esta espécie. Foi utilizado sêmen de três machos sexualmente maduros (4.6 ± 1.6 kg). O sémen foi diluído em uma proporção 1:4 usando três diferentes agentes crioprotectores (10% de dimetil sulfóxido [DMSO], 10% de Metanol [MET] Etileno glicol 5% [ETG]), com e sem a presencia de gema de ovo ao 12% (YH) e glucose a 5.5%. Além foram avaliados dos sistemas de envase (palhetas de 0.5 ml e 2.0 ml de macrotubos) que foram expostos a vapores de nitrogênio líquido (NL) e armazenados por 8 meses em NL. O sémen foi descongelado em banho-água a 37 ° C durante 60 segundos e determinou-se a motilidade massal (%) [MM], duração de motilidade (s) [DM], a integridade da membrana plasmática (%) [IMP] e Fertilidade (%). A motilidade pós-descongelação nos tratamentos foi significativamente diferente (P<0.05) sendo a melhor combinação MET 2.0 ml (53 ± 5.8%) comprados com o controle. Em relação ao controle, o DM teve um comportamento similar para todos os tratamentos sendo significativamente diferente para o ETG+YH 0.5 ml. O IMP permaneceu sem diferenças significativas no MET 2.0 ml em relação ao controle. A fertilidade foi significativamente menor na maioria dos tratamentos com YH, sendo o MET 2.0 ml o melhor (94.7 ± 0.6%). Em conclusão, o sêmen Colossoma macropomum é suscetível à criopreservação e o uso de YH em diluentes não é necessário.

Downloads

Os dados de download ainda não estão disponíveis.

Referências

Calizaya L, Yam E. 2013. Efecto de diferentes tiempos de criopreservación sobre la viabilidad del semen de Colossoma macropomum” gamitana”. (Tesis de maestría). Universidad Nacional de la Amazonía Peruana. Iquitos, Perú. 65 p

Castillo O. 2005. La piscicultura como alternativa de producción animal en Venezuela. Sistemas integrados de producción con no rumiantes. UNELLEZ. Portuguesa, Venezuela, 44-46.

Carneiro PC, Azevedo HC, Santos JP, María AN. Cryopreservation of tambaqui (Colossoma macropomum) semen: extenders, cryoprotectants, dilution ratios and freezing methods. CryoLetters. 2012;33(5):385-393.

De Silva SS, Soto D. El cambio y la acuicultura: repercusiones potenciales, adaptación y mitigación. Consecuencias del cambio climático para la pesca y la acuicultura: visión de conjunto del estado actual de los conocimientos científicos. FAO Documento Técnico de Pesca y Acuicultura. 2009;(530):169-236.

Espinoza C, Valdivia M, Dupré E. Morphological alterations in cryopreserved spermatozoa of scallop Argopecten purpuratus. Lat Am J Aquat Res. 2011;38(1):123-130.

FAO - Food and Agriculture Organization (2015). Colombia. Pesca en cifras 2014. Bogotá, Colombia.

FAO - Food and Agriculture Organization (2018). El estado mundial de la pesca y la acuicultura 2016. Cumplir los objetivos de desarrollo sostenible. Roma. 233 pp.

García RRF, Vasconcelos ACN, Povh JA, Oberst ER, Varela Jr AS, Corcini CD, Streit Jr DP. Functional integrity of Colossoma macropomum (Cuvier, 1816) sperm cryopreserved with enriched extender solutions. Neotrop Ichthyol. 2015;13(3):599-606.

Junior AV, Corcini CD, Gheller SMM, Jardim RD, Lucia Jr T, Streit Jr DP, Figueiredo MRC. Use of amides as cryoprotectants in extenders for frozen sperm of tambaqui, Colossoma macropomum. Theriogenology. 2012;78(2):244-251.

Leite LV, de Oliveira FDC, Nunes LT, Nunes JF, Salmito-Vanderley CSB. Criopreservação de sêmen de tambaqui (Colossoma macropomum) com ACP® adicionado de gema de ovo. Revista Brasileira de Engenharia de Pesca. 2012;6(2):23-29.

María AN, Viveiros ATM, Freitas RTF, Oliveira AV. Extenders and cryoprotectants for cooling and freezing of piracanjuba (Brycon orbignyanus) semen, an endangered Brazilian teleost fish. Aquaculture. 2006;260(1-4):298-306.

Maria AN, Azevedo HC y Carneiro PCF. 2009. Criopreservação de sêmen de peixes no contexto do agronegócio da piscicultura. Manejo e sanidade de peixes em cultivo. Macapá, AP, Embrapa Amapá, 47-63.

María AN, Azevedo HC, Santos JP, Silva CA, Carneiro PCF. Semen characterization and sperm structure of the Amazon tambaqui Colossoma macropomum. J Appl Ichthyol. 2010;26(5):779-783.

Maria AN, Azevedo HC y Carneiro PCF. 2011. Protocolo para criopreservação do sêmen de tambaqui (Colossoma macropomum). Embrapa Tabuleiros Costeiros-Comunicado Técnico (INFOTECA-E).

María AN, Carvalho ACM, Araújo RV, Santos JP, Carneiro PCF, Azevedo HC. Use of cryotubes for the cryopreservation of tambaqui fish semen (Colossoma macropomum). Cryobiology. 2015;70(2):109-114.

Medina-Robles VM, Velasco-Santamaría YM, Cruz-Casallas PE. Efecto del volumen de empaque sobre la tasa de congelación-descongelación y la fertilidad de semen crioconservado de yamú (Brycon amazonicus). Arch Med Vet. 2007;9(3):229-237.

Merino MC, Bonilla SP, Bages F. 2013. Diagnóstico del estado de la acuicultura en Colombia. Plan Nacional de Desarrollo de la Acuicultura Sostenible en Colombia AUNAP-FAO. Bogotá, Colombia: Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural

Miranda LA, Chalde T, Elisio M, Strüssmann CA. Effects of global warming on fish reproductive endocrine axis, with special emphasis in pejerrey Odontesthes bonariensis. Gen Comp Endocrinol. 2013;192:45-54.

Oliveira M, Silva de Almeida-Monteiro P, Teixeira-Nunes L, Aragão-Linhares FR, Silva-Pinheiro JP, Ribeiro-Pinheiro RR, Brito Salmito-Vanderley CS. Cryopreservation of tambaqui semen using a dry shipper and a programmed freezing machine. Semin Ciênc Agrár. 2016;37(4):2167-2179.

Poleo G, Aranbarrio JV, Mendoza L, Romero O. Cultivo de cachama blanca en altas densidades y en dos sistemas cerrados. Pesqui Agropecu Bras. 2011;46(4):429-437.

Ramírez‐Merlano JA, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Crioconservación seminal de bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Teleostei, Pimelodidae), bajo diferentes protocolos de congelación. Arch Med Vet. 2011;43:135-144.

Ramírez-Merlano JA, Velasco-Santamaría YM, Medina-Robles VM, Cruz-Casallas PE. Cryopreservation effects on the sperm quality of Cachama Blanca Piaractus brachypomus (Cuvier 1818). Aquac. Res. 2011;42(6):738-745.

Sanabria A. 2004. Catálogo de las principales especies de peces ornamentales de Colombia especies de interés comercial. INCODER, Instituto Colombiano de Desarrollo Rural.

Varela Junior AS, Corcini CD, Streit Junior DP, Rizzoto G, Jardim RD, Lucia Junior T, Figueiredo MRC. Efeito crioprotetor de diferentes concentrações do dimetilsulfóxido no congelamento de sêmen de tambaqui Colossoma macropomum. Atlantica Rio Grande. 2012;34(2):129-137.

Vieira MJAF, Carvalho MAM, Salmito-Vanderley CSB, Salgueiro CDM, Viveiros ATM, Moura AAAN, Nunes JF. Características do sêmen de tambaqui (Colossoma macropomum) em latitude equatorial. Arch Zootec. 2011;60(232):1263-1270.

Publicado

2019-06-16

Edição

Seção

Ciências agrícolas

Como Citar

Criopreservação seminal de Colossoma macropomum como estratégia de produção e conservação na Orinoquia Colombiana. (2019). Orinoquia, 23(1), 15-24. https://doi.org/10.22579/20112629.537

Artigos Semelhantes

1-10 de 23

Você também pode iniciar uma pesquisa avançada por similaridade para este artigo.

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)

1 2 3 > >>