Avaliação do período de enchimento e evacuação intestinal de Brachionus calyciflorus (Rotifera: Brachionidae) alimentado com Chlorella sp
DOI:
https://doi.org/10.22579/20112629.540Palavras-chave:
Comida viva, microalga, rotífero, volume intestinalResumo
A fim de determinar a viabilidade do rotífero de água doce Brachionus calyciflorus utilizado como alimento vivo na fase de larvicultura, foi avaliado o período cronológico de enchimento e evacuação intestinal através da alimentação com diferentes concentrações de microalga Chlorella sp. em estado condensado. Os tratamentos foram, T1: 1,2×106 células/mL, T2: 5,2×106 células/mL, T3: 10,4×106 células/mL e T4: 15,4×106 células/mL, numa densidade de 40 rotíferos/mL para cada tratamento. Foi realizado um analise de imagem e aplicado um teste de variância ANOVA e o teste múltiplo de Tukey aos resultados dos tratamentos onde foram estabelecidas diferenças significativas (P≤0.05); as variáveis analisadas foram: volume corporal, volume intestinal, volume intestinal expresso em porcentagem e tempo de trânsito intestinal. Para a análise morfométrica, a faixa de volume corporal foi de 0,7×106 μm3 a 2,6 ×106 μm3. O tempo mínimo de enchimento e evacuação foi de 60 minutos. As porcentagens intestinais em sua repleção máxima para cada tratamento foram T1: 5,55%, T2: 8,62% T3: 10,53% e T4: 8,08%. Em consequência, o tempo ideal para fornecer o rotífero B. calyciflorus como alimento vivo na larvicultura é de 105 - 225 minutos, após o início da ingesta da microalga.Downloads
Referências
Ardila A, López Y, Vásquez M, Gonzales A, Barajas A. Obtención de lípidos y carbohidratos a partir de microalgas mediante el diseño de medios de cultivo selectivos. Tecno Logicas. 2017;20:83-94.
Baer A, Langdon C, Mills S, Schulz C, Hamre K. Particle size preference, gut filling and evacuation rates of the rotifer Brachionus “Cayman” using polystyrene latex beads. En Aquaculture. 2008;282(1-4):75-82.
Dhert P, Rombaut G, Suantika G, Sorgeloos P. Advancement of rotifer culture and manipulation techniques in Europe. Aquaculture. 2001:130-146.
Dhont In G. Allen (Ed.). En Advances in Aquaculture Hatchery Technology. Cambridge: Woodhead Publishing. Series in Food Science, Technology and Nutrition; 2013;242:167-191. J. Rotifers, Artemia and copepods as live feeds for fish larvae in aquaculture.
Gilbertj JJ. (n.d.). Mictic Female Production in the Rotifer Brachionus calyciflorus, 113–123.
Kleinow W, Wratil H, Kuhle K, Esch B. 1991. Electron microscope studies of the digestive tract of Brachionus plicatilis (Rotífera). En Zoomorphology. p 67- 80.
Lubzens E, Tandler A, Minkoff G. Rotifers as food in aquaculture. Hydrobiologia. 1989;186(1):387-400.
Román J, Castañeda D, Castillo H, Bojórquez R, Rodríguez G. Dinámica poblacional del rotífero Brachionus ibericus aislado de estanques para camarón, alimentado con diferentes dietas. Latin american journal of aquatic research, 2014;42(5):1159-1168.
Romero S, Yúfera M. Contribution of gut content to the nutritional value of Brachionus plicatilis used as prey in larviculture. En Aquaculture. 2012;364:124-129.
Sipabua L, Rocha O. 2003. Produção de plâncton (Fitoplâncton e Zooplâncton) para a alimentação de organismos aquáticos. RiMa, São Carlos.
Støttrup J, McEvoy L. 2008. Live feeds in marine aquaculture. Vol. 1st ed. Oxford, Oxford: John Wiley & Sons. Blackwell Science. p. 17-52.
Srivastava A, Hamre K, Stoss J, Nordgreen A. A study on enrichment of the rotifer Brachionus “Cayman” with iodine from different sources. Aquaculture. 2012;334:82-88.
Xue Y, Yang X, Zhang G, Xi Y. Morfological differentiation of Brachionus calyciflorus caused by predation and coal ash pollution. En Scientific reports. 2017;7(1):1-8.
Yufera M. Morphometric characterization of a small-sized strain of Brachionus plicatilis in culture. Aquaculture. 1982;27(1):55-61.
Yúfera M, Pascual E. Effects of algal food concentration on feeding and ingestion rates of Brachionus plicatilis in mass culture. Hydrobiologia. 1985;122(2):181-187.
